森 靖典 生命科学研究科・ 膜輸送機構解析分野 （福田研究室） e-mail: yasumori@m.tohoku.ac.jp 海馬ニューロンの分散培養法について 森 靖典 生命科学研究科・ 膜輸送機構解析分野 （福田研究室） e-mail: yasumori@m.tohoku.ac.jp トピックス ・海馬ニューロン分散培養法 ・私たちの研究室での研究内容（膜輸送について）

分散培養による神経細胞の観察 利点 欠点 ・軸索、樹状突起の観察が容易 ・ほぼ単一の神経細胞を得ることが可能 　（海馬から摘出した場合は90％以上が興奮性の錐体神経 (pyramidal neuron)） ・遺伝子導入が容易（リポフェクション法） ・神経が成熟するまで長期培養できる→シナプス（軸索と樹状突起の接合部）の 観察も可能 etc.... 欠点 ・細胞が移動しない→層構造などの研究には不向き ・グリア細胞が存在しないので、グリア細胞による影響がわからない ・ディッシュ上の現象と、実際の脳内での現象で違う場合もある ・ニューロンが分散された状態なので、実際の神経回路は構築できない etc....

摘出した海馬からニューロンを培養する方法は古くから確立されている なお、この手法は別名 Banker Methodとも呼ばれている 海馬ニューロン分散培養法の 大まかな流れ Gary Banker (Oregon Health and Science University) 1.海馬の摘出 ↓ 2.海馬をトリプシン処理 3.細胞をディッシュへ 恒温室内で培養 http://www.ohsu.edu/xd/research/centers-institutes/neurology/jungers-center/research/banker-lab.cfm (Kaech S and Banker G 2006) (Banker GA and Cowan WM 1977) 摘出した海馬からニューロンを培養する方法は古くから確立されている なお、この手法は別名 Banker Methodとも呼ばれている

・実体顕微鏡 ・解剖ばさみ ・No5ピンセット etc... 海馬ニューロン分散培養法で 使用する道具 ・実体顕微鏡 ・解剖ばさみ ・No5ピンセット etc... 実体顕微鏡 (M50, Leica)

胎生16.5日目のマウスから脳を取り出し海馬を摘出する （この時期の大脳では神経幹細胞が豊富に存在する） 1.海馬の摘出 1.海馬の摘出 ↓ 2.海馬をトリプシン処理 3.細胞をディッシュへ 恒温室内で培養 (Viesselmann C et al 2011) 胎生16.5日目のマウスから脳を取り出し海馬を摘出する （この時期の大脳では神経幹細胞が豊富に存在する）

トリプシン処理とピペット操作による物理的な力で 組織から細胞を引きはがす 2.海馬のトリプシン処理 1.海馬の摘出 ↓ 2.海馬をトリプシン処理 3.細胞をディッシュへ 恒温室内で培養 (Viesselmann C et al 2011) トリプシン処理とピペット操作による物理的な力で 組織から細胞を引きはがす

ガラスが入っているデッシュに細胞をまく （顕微鏡下での観察のため） 3.細胞をディッシュへ 1.海馬の摘出 ↓ 2.海馬をトリプシン処理 3.細胞をディッシュへ 恒温室内で培養 (Viesselmann C et al 2011) ガラスが入っているデッシュに細胞をまく （顕微鏡下での観察のため） 3日後にAraCという薬剤を加えて、神経以外の細胞を殺す （AraCは分裂する細胞特異的に影響するが、神経細胞は非分裂なので影響はない）

神経細胞の発生の様子 まだ神経突起を伸ばしていない状態 1.海馬の摘出 Stage 1 ↓ (0 hour) 2.海馬をトリプシン処理 3.細胞をディッシュへ 恒温室内で培養 Stage 1 (0 hour) 神経突起を伸ばし始める。 ただし、軸索、樹状突起の 運命決定はまだなされていない Stage 2 (6 hour) 神経突起が一本の軸索と 数本の樹状突起に決定される Stage 3 (24 hour) (Dotti CG et al 1988)

軸索と樹状突起では突起の伸長パターンが異なる 軸索と樹状突起の伸長の様子 1.海馬の摘出 ↓ 2.海馬をトリプシン処理 3.細胞をディッシュへ 恒温室内で培養 http://www.youtube.com/watch?v=EP4yeyD8ktY 軸索と樹状突起では突起の伸長パターンが異なる

GFPにより神経の形態観察技術が飛躍的に向上した 神経細胞への遺伝子導入 共焦点レーザー顕微鏡 (FV-1000, Olympus) Lipofectamine 2000（リポフェクション法の試薬）を用いて GFP遺伝子を導入して、共焦点レーザー顕微鏡による観察した画像 GFPにより神経の形態観察技術が飛躍的に向上した

プレシナプス； 軸索側、シナプス小胞の集積 ポストシナプス； 樹状突起側、スパインと呼ばれるキノコ型の突起が形成され そこに受容体が集積 成熟した神経細胞でのシナプス観察 プレシナプス； 軸索側、シナプス小胞の集積 ポストシナプス； 樹状突起側、スパインと呼ばれるキノコ型の突起が形成され そこに受容体が集積 21 DIV (day in vitro) ポストシナプスマーカー プレシナプスマーカー 樹状突起マーカー 合成像 (Okabe S et al 1999)

小胞（膜）は必要に応じて、 細胞内の様々な場所に輸送される 膜輸送とは？-小胞について- 小胞：様々な物質や膜タンパク質が存在している膜 （小胞内物質：神経伝達物質 、ホルモン、メラニン、etc） （膜タンパク質：トランスポーター、受容体、etc） 小胞（膜）は必要に応じて、 細胞内の様々な場所に輸送される

膜輸送に関する研究 -小胞（膜）の輸送の仕組みを調べる- Stenmark H (2009) Nat. Rev. Mol. Cell Biol 10:513-525 国内には様々な交通手段があるのと同様に、 細胞内には小胞を運ぶために様々な交通手段がある ↓ 私たちは、細胞の交通事情を研究しています

神経細胞における選択的な輸送メカニズムは、 まだ明らかになっていない部分が多い！ 神経細胞の交通事情は？ receptor , etc 軸索には神経伝達物質の放出 に関わる分子が選択的に 運ばれる。 一方、樹状突起には神経伝達 物質の受容体分子が選択的に運ばれる ↓ そのメカニズムは？ neurotransporter , etc 神経細胞における選択的な輸送メカニズムは、 まだ明らかになっていない部分が多い！

軸索もしくは樹状突起特異的な輸送メカニズムの解明に向けて モデル neurotransporter , etc receptor , etc 東海道新幹線 東北新幹線 軸索もしくは樹状突起への特異的な輸送に関わる分子が 存在するのではないだろうか？

参考文献 Banker GA, Cowan WM (1977) Rat hippocampal neurons in dispersed cell culture. Brain Res. 126:397-342 Kaech S, Banker G (2006) Culturing hippocampal neurons. Nat Protoc 1:2406-2415 Dotti CG, Sullivan CA, Banker GA (1988) The establishment of polarity by hippocampal neurons in culture. J. Neurosci 8:1454-1468 Okabe S, Kim HD, Miwa A, Kuriu T, Okado H (1999) Continual remodeling of postsynaptic density and its regulation by synaptic activity. Nat. Neurosci 2:804-811 Viesselmann C, Ballweg J, Lumbard D, Dent EW (2011) Nucleofection and Primary Culture of Embryonic Mouse Hippocampal and Cortical Neurons. Journal of Visualized Experiments ・田中秀和　海馬ニューロンの培養　日薬理誌　第119巻　163-166頁 2002年 ・岡戸晴生、他　脳・神経研究プロトコール-細胞培養から機能解析へ　79-85頁 羊土社 1997年 ・脳・神経研究の進めかた　羊土社　1998年 ・京都大学・大学院薬学系研究科・生体分子認識学分野・ラボプロトコル・海馬神経初代分散培養法 http://www.pharm.kyoto-u.ac.jp/biochem/kaiba.htm ・東京医科歯科大学・大学院・病体代謝解析分野・実験プロトコル・海馬神経初代分散培養法 http://www.tmd.ac.jp/med/mmch/protocol/1-6.html